Annexin V-Elab Fluor? 647/PI 熒光雙染細胞凋亡檢測試劑盒

保存條件

2~8℃可保存1年。Annexin V-Elab Fluor^? 647禁止冷凍保存。

實驗原理

Annexin V-Elab Fluor? 647 / PI 熒光雙染細胞凋亡檢測試劑盒，可用于檢測懸浮細胞和貼壁細胞的凋亡。

Annexin V是一種鈣離子依賴性磷脂結合蛋白，與磷脂酰絲氨酸 (PS) 有高度親和力。當細胞發生凋亡時，膜內側的磷脂酰絲氨酸 (PS) 外翻到膜表面，而被熒光染料Elab Fluor^? 647標記的Annexin V結合，可通過流式細胞儀或熒光顯微鏡進行檢測。

由于凋亡晚期或壞死細胞膜喪失完整性，而碘化丙啶（Propidium Iodide, PI）可與雙鏈DNA特異性結合并產生強烈的熒光，與Annexin V搭配使用，可區分處于不同凋亡時期的細胞。

本試劑盒檢測喜樹堿誘導的Jurkat細胞凋亡效果如下圖所示：

試劑配制

1×Annexin V Binding Buffer：取1 mL Annexin V Binding Buffer (10×)加入9 mL去離子水中混勻。

實驗操作

一步法

1．  細胞按照實驗方案進行凋亡誘導，300 ×g離心5 min，棄上清，收集細胞，PBS洗滌一次，輕輕重懸細胞并計數。

2．  取1~5 × 10⁵重懸的細胞，300 ×g離心5 min，棄上清。用PBS洗滌細胞一次，離心后棄上清，加入500 μL稀釋的1 × Annexin V Binding Buffer重懸細胞。

3．  細胞懸液中加入5 μL的Annexin V-Elab Fluor? 647 染色液和5 μL的PI 染色液 (50μg/mL)。

4．  輕柔渦旋混勻后，室溫避光孵育15~20 min。

5．  立即上機檢測。如不能及時檢測，請于冰上避光靜置并于1小時內完成檢測。

注：流式細胞儀檢測時Annexin V-Elab Fluor^? 647可用APC通道，PI優先選擇ECD通道，其次是PE通道；如果樣本有FITC通道的自發熒光，則選擇PerCP/Cy5.5通道。

兩步法

1．  細胞按照實驗方案進行凋亡誘導，300 ×g離心5 min，棄上清，收集細胞，PBS洗滌一次，輕輕重懸細胞并計數。

2．  取1~5 × 10⁵重懸的細胞，300 ×g離心5 min，棄上清。用PBS洗滌細胞一次，離心后棄上清，加入100 μL稀釋的1 × Annexin V Binding Buffer重懸細胞。

3．  細胞懸液中加入2.5 μL的Annexin V-Elab Fluor? 647染色液和2.5 μL的PI 染色液 (50μg/mL)。（由于兩步法分辨率更高，染色液用量減半依然可得到媲美一步法的效果；用戶亦可根據自己的模型進行滴定后加入適量的染色液，用更少的量獲得高質量的結果。）

4．  輕柔渦旋混勻后，室溫避光孵育15~20 min。

5．  加入400 μL稀釋的1 × Annexin V Binding Buffer，混勻樣本。

6．  立即上機檢測。如不能及時檢測，請于冰上避光靜置并于1小時內完成檢測。

注：流式細胞儀檢測時Annexin V-Elab Fluor^? 647可用APC通道，PI優先選擇ECD通道，其次是PE通道；如果樣本有FITC通道的自發熒光，則選擇PerCP/Cy5.5通道。

注意事項

1.         本產品僅供科研使用。

2.         檢測貼壁細胞時，需收集誘導凋亡后產生的懸浮細胞，并與后續收集的貼壁細胞一起檢測。

3.         應盡量避免消化貼壁細胞帶來的機械損傷。同時，胰酶的消化液中應盡量不含EDTA，因為EDTA會影響Annexin V與磷脂酰絲氨酸的結合。

4.         如果使用含EDTA的胰酶，收集細胞后應充分清洗，確保EDTA被去除干凈。

5.         染色后宜盡快檢測，時間過長可能會導致凋亡或壞死細胞的數量增加。

6.         熒光物質均易發生淬滅，在進行熒光觀察時，盡量縮短觀察時間，同時在操作和存放過程中也盡量注意避光保存。

7.         為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

(本試劑產品僅供科學研究或進一步生產使用，不可用于臨床診斷或治療)